MENGENAL KARRIKINS

MENGENAL “ KARRIKINS”  ZAT PENGATUR TUMBUH BERBASIS ASAP

OLEH IMAS AISYAH SP., M.Si

(FUNGSIONAL UMUM P4TK PERTANIAN CIANJUR)

Zat pengatur tumbuh adalah senyawa organik yang diproduksi secara alami di dalam tumbuhan, dan pada konsentrasi rendah  memiliki peran penting dalam mengontrol proses biologi dalam jaringan tanaman.  Zat pengatur tumbuh juga dikenal dengan sebutan fitohormon, yang berperan sebagai pembawa pesan kimia yang mengontrol siklus hidup dan kegiatan fisiologis seperti perkecambahan, regulasi pertumbuhan dan perkembangan tanaman seperti pembentukan batang, daun, tunas, buah, pengembangan dan pemtangan buah, perkembangan akar, pemanjangan akar rambut dan pembentukan akar lateral, dan lain-lain (Davies, 1995; Gaba, 2005).  Ada 5 jenis ZPT yang diproduksi secara alami oleh tumbuhan yang sudah dikenal khalayak yaitu: auksin, sitokinin, etilen, giberelin, dan asam absisat (ABA).  Selain itu, ada juga fitohormon dari kelas butenolide yang dilepaskan oleh akar tanaman sebagai adaptasi tanaman pada saat tanaman mengalami stress dari lingkungan, salah satunya adalah Strigolactone (Koltai & Kapulnik 2011).   Strigolactones adalah kelompok sesquiterpen lakton yaitu sejenis metabolit sekunder yang dilepaskan oleh akar tanaman pada saat kondisi stres biotik dan abiotik.  Sesquiterpen lakton yang dilepaskan oleh akar tanaman dari kelompok Asteraceae dilaporkan memiliki efek biologis yang menguntungkan bagi pertumbuhan dan perkembangan tanaman (Chadwick et al. 2013).  Strigolactone sendiri adalah fitohormon yang memiliki efek positif pada pengembangan akar, yaitu terhadap pemanjangan akar rambut dan pembentukan akar lateral (Koltai 2011).  Strigolactone juga diduga menjadi regulator kunci dari respon adaptif tanaman terhadap fosfat rendah dengan  memodulasi keseimbangan antara auksin dan etilen signaling yang bertanggung jawab atas perkembangan akar (Koltai 2013).  Dalam tulisan ini penulis akan menginformasikan satu jenis ZPT yang mungkin belum dikenal oleh khalayak secara luas, baik namanya, peran, dan mekanisme kerjanya dalam mengatur pertumbuhan tanaman. 

Ada yang berpendapat karrikins bukanlah fitohormon kerena tidak dproduksi oleh tumbuhan, pendapat ini ada benarnya, karena karrikins  hanya ditemukan di dalam asap hasil pembakaran kayu.  Namun, senyawa karrikins (3-methyl-2H-furo[2,3-c]pyran-2-one) memiliki kemiripan struktur dan kemiripan efek fisiologis dengan fitohormon tanaman “strigolactone”, dari kelas butenolide, sehingga karrikin kemudian dimasukkan ke dalam zat pengatur tumbuh baru dari kelas butenolide yang berasal dari asap (Chiwocha et al. 2009).  

Senyawa dalam asap (pada teknik pengasapan langsung) diyakini selain dapat menurunkan kadar air benih hasil panen, juga dapat memperpanjang masa simpan benih atau mengawetkan benih, meminimalkan kerusakan  benih  dari serangan hama  atau patogen benih,  dan dapat meningkatkan perkecambahan benih dan vigor bibit (Paasonen et al. 2003).  Peran asap dalam memecahkan dormansi benih, merangsang perkecambahan beih dan pertumbuhan bibit telah dipelajari sejak tahun 1990, dan baru pada tahun 2004 senyawa aktif di dalam asap yang berperan dalam memecahkan dormansi benih, merangsang perkecambahan benih dan pertumbuhan bibit ditemukan, dan senyawa tersebut adalah “karrikins” (Flematti et al. 2004).  Menurut Flematti et al. (2011), senyawa karrikins berasal dari penguraian termal (pirolisis) karbohidrat seperti selulosa.  Karrikins dilaporkan dapat meningkatkan pertumbuhan bibit dan vigor bibit pada banyak spesies yaitu sekitar 1200 spesies lebih dari 80 famili (Dixon et al. 2009).  Karrikins memiliki rumus kimia C₈H₆O₃, dan strukturnya dapat dilihat pada Gambar 1.

                                                               

Gambar 1.  Struktur karrikins

Menurut Kepczynski &Van Stade (2012) dan Johnson & Ecker (1998), karrikins bekerja sebagai sinyal positif untuk pembentukan ACC (Aminocyclopropane-1-carboxylate) yang menjadi prekursor dalam pembentukan etilen endogen dalam tanaman.  Mekanisme biosintesis etilen dari metionine dapat dilihar pada Gambar 2.  Biosintesis etilen dari metionin diawali dengan konversi metionin menjadi SAM (S-Adenosylmethionine) yang diaktivasi oleh enzim SAM synthase, selanjutnya konversi SAM menjadi ACC(Aminocyclopropane-1-carboxylate) diaktivasi oleh ACC synthase dan konversi ACC menjadi etilen diaktivasi oleh ACC oxidase (Pratt & Goeschl 1969). 

                        

Gambar 2.  Mekanisme biosintesis etilen (Pratt&Goeschl 1969) 

Keterangan:      SAM= S-Adenosylmethionine; ACC=Aminocyclopropane-1-carboxylate

Sebagaimana fitohormon berperan sebagai sinyal yang dapat mengaktifkan gen yang potensial, senyawa karrikins juga berperan sebagai sinyal biologis/prekursor yang dapat mengaktifkan transkripsi keluarga gen IAA (Indole-3-Acetic Acid ), seperti IAA1, IAA5 dan IAA6, yang berperan dalam biosintesis auksin (Waters et al. 2014).  Mekanisme karrikins dalam menginduksi gen auksin (IAA) digambarkan dalam Gambar  3. 

Dari Gambar 3 dijelaskan bahwa senyawa karrikin juga berperan sebagai sinyal biologis/prekursor yang dapat mengaktifkan transkripsi keluarga gen IAA (Indole-3-Acetic Acid), seperti IAA1, IAA5 dan IAA6, yang berperan dalam biosintesis auksin (Waters et al. 2014).  Mekanisme karrikins dalam menginduksi gen auksin (IAA) digambarkan dalam Gambar  5.  Dari Gambar 5 dijelaskan bahwa sinyal karrikin dapat dikenali oleh protein reseptor yaitu KAI₂ (Karrikin Insensitive 2), KAI₂ adalah protein α/β-hydrolase yang memiliki aktivitas mengkatalisis hidrolisis atom karbonil dari cincin butenolide dari karrikin, pembukaan cincin butenolide ini akan mempercepat proses tranduksi sinyal karrikin pada tanaman.  KAI₂ ini akan berikatan dengan komplek SCF-MAX₂ (F-Box), dan kompleks KAI₂-SCF-MAX₂ (F-Box), akan dikenali dan diikat oleh represor (SMAX1), SMAX1 adalah protein penekan MAX₂ (F-Box), sehingga transkripsi gen-gen target tidak terjadi.  Supaya transkripsi gen-gen target terjadi,  maka  SMAX1 ini harus dihancurkan.  SMAX1 ini dihancurkan oleh protein ubiquitin (Ub) yaitu SCF.  SCF mempunyai peran yang sama dengan domain APC (Anaphase-Promoting-Complex), yang dapat mengenali protein target secara spesifik yang akan dihancurkannya.   Setelah protein target (SMAX1) hancur, maka kompleks KAI₂-SCF-MAX₂ (F-Box), ini kemudian akan aktif bekerja untuk mentrankripsi gen-gen target, salah satunya gen IAA1 dan IAA5, IAA6 yang berperan dalam biosintesis auksin (Indole-3-Acetic Acid), kehadiran auksin ini akan menginduksi gen GA3ox yang berperan dalam biosintesis giberelin, dan giberelin ini bekerja mengatur petumbuhan tanaman, termasuk proses perkecambahan biji, pengembangan bibit, daun dan bunga.  Karrikins juga dilaporkan dapat menginduksi transkripsi gen GA3ox1 dan GA3ox2 yang berperan dalam biosintesis giberelin (GA) (Nelson et al. 2009).

                       

Gambar 3.  Mekanisme karrikin dalam menginduksi gen IAA 

(Waters et al. 2014)

Karrikins juga diduga menjadi sinyal yang menengahi pengaturan cross-talk antar hormonal seluler, sesuai dengan pendapat  Johnson & Ecker (1998) dan Chang & Stadler (2001) melaporkan bahwa karrikin berperan sebagai sinyal yang memicu pembentukan etilen endogen dalam tanaman, dan sinyal etilen dapat memicu pembentukan hormon auksin, selanjutnya sinyal auksin dapat mengaktifkan hormon giberelin, dan giberelin tersebut kemudian akan meregulasi pertumbuhan tanaman.  Interaksi antar hormon etilen, auksin dan gibberelin dalam meregulasi pertumbuhan tanaman dijelaskan dalam Gambar 4. 

                      

Gambar 4.       Skema integrasi hormon etilen, auksin dan giberelin (GA) dalam meregulasi pertumbuhan tanaman (Archard et a.l 2003)

Dari Gambar 4 dapat dijelaskan bahwa interaksi antar hormon etilen, auksin dan gibberelin dalam meregulasi pertumbuhan tanaman.  Menurut Archard et al. (2003),  sinyal etilen dikenali dan diikat oleh protein reseptor, salah satunya oleh ETR,  pengikatan sinyal etilen oleh ETR ini akan menginaktivasi CTR1 (regulator negatif EIN2 (Ethylen Insensitive 2)), dan  inaktivasi CTR1 ini akan memungkinkan EIN2 (Ethylen Insensitive 2) aktif dan berinteraksi dengan EIN3 (Ethylen Insensitive 3), selanjutnya EIN3 ini akan berikatan dengan ERF1 (Ethylen Responsive Factor 1), selanjutnya kompleks EIN3-ERF1 ini menjadi faktor transkripsi yang akan pergi dan bergerak ke daerah mRNA, yang terdapat di nukleus, kemudian akan duduk berdekatan dengan Cis Acting Element (GCC Box) (AGCCGCC) yang terdapat di daerah promotor, dan kondisi ini akan memediasi transkripsi gen-gen target termasuk gen yang mengatur biosintsis Auksin.  pada saat tidak ada auksin, hormon ABA hadir untuk menekan giberelin dan protein DELLA yang berperan dalam menekan aktivitas giberelin akan mengikat giberelin (GA) sehingga giberelin (GA) menjadi tidak aktif.  Tetapi setelah sinyal auksin hadir, hormon ABA akan ditekan dan GA akan setengah aktif karena masih berikatan dengan protein DELLA, untuk melepaskan ikatan protein DELLA, GA akan berikatan dengan reseptor protein GID1 (GA-INSENSITIVE DWARF 1) melalui ikatan hidrogen, sehingga terbentuk ikatan kompleks GA-GIDI, selanjutnya GA-GIDI ini akan dikenali dan diikat oleh protein SCF^SLY1 (Protein SCF^SLY1 ini dapat mengenali protein target (protein DELLA) yang akan dihancurkannya  secara spesifik).  Kemudian kompleks GA-GID1-SCF^SLY1 ini akan mengenali dan mengikat protein DELLA, dan kemudian menghancurkan protein DELLA, jika protein DELLA terdegradasi, maka GA menjadi aktif dan jika sudah aktif GA akan meregulasi berbagai aspek dari siklus hidup tanaman dan respon pertumbuhan lainnya. 

Semoga tulisan ini bermanfaat dan menambah wawasan bagi siapa saja yang membacanya.  Terimakasih.

DAFTAR PUSTAKA

Archard P, Vriezen HW, Van Der Straeten D, Harberd PN.  2003.  Ethylene Regulates Arabidopsis Development via the Modulation of DELLA Protein Growth Repressor Function.  Plant Cell.  15(12): 2816-2825.

Chadwick M, Trewin H,  Gawthrop F, Wagstaff C.  2013.  Sesquiterpenoids Lactones: Benefits to Plants and People.  Int J Mol Sci. 14(6): 12780–12805.

Chang C and Stadler R. 2001.  Ethylen hormon receptor action in Arabidopsis.  Bioessay. 23(7): 619-627. 

Chiwocha SDS,  Dixon WK, Flematti RG,  Ghisalberti LE,  Merritt JD, Nelson CD, Riseborough MJ, Smith MS, Stevens CJ.  2009.  Karrikins: a new family of plant growth regulators in smoke. Plant Sci. 177: 252–256.  https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2009.06.007

Davies, P.J. 1995. The plant hormone their nature, occurence and function. In Davies (ed.) Plant Hormone and Their Role in Plant Growth Development. Dordrecht Martinus Nijhoff Publisher

Dixon KW, Merrtit DJ, Flematti GR, Ghisalberti EL. 2009.  Karrikinolide a phytoreactive compound derived from smoke with application in horticulture, ecological restoation and agriculture.  Acta Horti.  813: 155-170.

Flematti RG,  Ghisalberti LE, Dixon WK, Trengove DR.  2004.  A compound from smoke that promotes seed germination.  Science. 305: 977

Flematti RG,  Merritt JD, Piggott JM, Trengove DR, Smith MS, Dixon WK, Ghisalberti LE.  2011.  Burning vegetation produces cyanohydrins that liberate cyanide and promote seed germination.  Nat. Commun. 2: 360.

Gaba, V.P. 2005. Plant Growth Regulator. In R.N. Trigiano and D.J. Gray (eds.) Plant Tissue Culture and Development. CRC Press. London. p. 87-100

Johnson PR, Ecker JR. 1998.  The ethylen gas signal transduction pathway: a molecular perspective.  Annu Rev. Genet. 32: 227-254.

Kepczynski, J., Van Staden, J. 2012.  Interaction of karrikinolide and ethylen in controlling germination of dormant Avea fatua L. Caryopsis.  Plant Growth Regul.  67:185-190.

Koltai H^.  2011.  Strigolactones are regulators of root development.  New Phytol. 3:545-9.

Koltai H, Kapulnik Y.  2011.  Strigolactones as mediators of plant growth responses to environmental conditions. Plant Signal Behav. 6(1):37-41

Koltai H^.  2013.  Strigolactones activate different hormonal pathways for regulation of root development in response to phosphate growth conditions.  Ann Bot. 2013 Jul;112(2):409-15. Doi: 10.1093/aob/mcs21

Nelson DC, Anne Riseborough J, Flematti GR, Stevens J,  Ghisalberti SJ, Dixon KW, Smith SM. 2009.  Karrikins discovered in smoke trigger Arabidopsis seed germination by a mechanism requiring gibberellic acid synthesis and light. Plant Physiol 149:863–873. Https://doi.org/10.1104/pp.108.131516

Paasonen, M., Hannukkala, A., Ramo, S., Haapala, H., Hietaniemi, V. (2003). Smoke-a novel application of a traditional means to improve grain quality. In: Nordic Association of Agricultural Scientists 22nd Congress, Turku, Finland.

Pratt HK, Goeschl JD.  1969.  Physiological roles of ethylen in plants.  Annual Revies of Plant Physiology. 20: 541-584

Waters TM, Scaffidi A, Sun KY, Flematti RG,  Smith MS.  2014.  The karrikin response system of Arabidopsis.  The Plant Journal. 79: 623–631. Doi: 10.1111/tpj.12430

Perbanyakan tanaman secara kultur jaringan

Aklimatisasi anggrek tahap 3

Aklimatisasi anggrek tahap 2

Aklimatisasi anggrek tahap 1

Aklimatisasi anggrek

My Family

Belajar menyilang bunga anggrek

BELAJAR MENYILANG ANGGREK YUK...!
Oleh Dr. Imas Aisyah SP., M.Si (Widyaiswara Ahli Muda P4TK Pertanian Cianjur)

Pendahuluan

Salah satu komoditi tanaman hias yang memiliki bunga dengan keindahan yang khas dan mempunyai nilai ekonomi tinggi, sehingga banyak digemari oleh masyarakat dalam negeri dan luar negeri adalah tanaman anggrek. Tanaman anggrek menghasilkan bunga yang indah dan menarik, oleh karena itu Pemerintah telah menetapkan bunga anggrek sebagai salah satu bunga Nasional. Ada sekitar 10.000 spesies anggrek di Indonesia yang tersebar di beberapa propinsi. Keadaan ini merupakan peluang bagi pengembangan tanaman anggrek ke depan. Salah satu kegiatan pengembangan tanaman anggrek adalah dengan melakukan kegiatan persilangan bunga anggrek dengan tujuan untuk menghasilkan varietas baru dengan warna dan bentuk bunga menarik, yang nantinya dapat menambah kekayaan spesies anggrek di Indonesia (Widiastoety 2001).

Persilangan pada tanaman anggrek tidak bisa terjadi secara alami kecuali pada jenis anggrek tertentu, oleh karena anggrek memiliki struktur bunga yang khas dengan kepala putik yang terletak di dalam maka sulit terjangkau serangga. Penyerbukan alami dengan bantuan angin juga jarang terjadi. Salah satu cara adalah penyerbukan dengan bantuan manusia. Penyerbukan dengan bantuan manusia dilakukan melalui persilangan/ hibridisasi.

Dasar dilakukannya persilangan bunga anggrek ini adalah untuk memperkaya keanekaragaman genetik pada bunga anggrek yaitu memperoleh bunga anggek yang warna bunga dan bentuk bunganya unik, dan memiliki nilai komersial yang tinggi. Menurut Andayani (2007) persilangan pada anggrek ini dapat dilakukan melalui perlakuan penyerbukan sendiri atau perlakuan penyerbukan silang. Pada perlakuan penyerbukan sendiri artinya putik satu bunga diserbuki dengan benangsari (pollen) berasal dari bunga yang sama.

Sedangkan penyerbukan silang artinya putik pada satu bunga diserbuki dengan menggunakan serbuk sari yang berasal dari bunga pada tanaman lain tetapi masih satu jenis tanaman. Adapun cara menyilang anggrek ini akan dibahas lebih lanjut dalam tulisan ini. Sebelum melakukan penyilangan, kita harus mengenal bagian-bagian bunga anggrek (Gambar 1).

                                                 Gambar 1. Bagian-bagian bunga anggrek

Pada umumnya, ada 4 bagian utama pada bunga anggrek yaitu:

1. sepal (kelopak bunga). Sepal merupakan pelindung terluar pada saat bunga anggrek masih kuncup, jumlahnya ada 3 helai dan umumnya memiliki warna khas yang berbeda dengan sepal tumbuhan lain. Letaknya membentuk sudut segitiga, satu di atas (sepal dorsal) dan 2 sepal samping (lateral).
2. petal (mahkota bunga). Petal (mahkota) anggrek juga berjumlah 3 helai dengan posisi juga membentuk segitiga dengan dua helai di bagian atas membentuk sudut 120 derajat dan satu helai lagi termodifikasi membentuk bibir atau labellum
3. lidah (labellum). Labellum ini merupakan sebuah daya tarik tersendiri yang merupakan ciri keunikan dari suatu jenis karena memiliki bentuk dan warna yang beragam. Selain itu labellum berfungsi sebagai daya tarik bagi lebah untuk menghisap madu. Kedatangan lebah ini dapat membantu terjadinya penyerbukan.
4. benang sari (stamen) dan putik (pistil) nya bersatu dan membentuk bagian yang disebut column yang tetutup cap Jika cap dibuka terdapat pollen atau polinia (gumpalan serbuk sari) yang terhubung melalui sebuah plasenta. Polinia umumnya berwarna kuning. Jumlah polinia tergantung pada masing-masing spesies ada yang 2, 4, 6 atau 8. Polinianya 2 terdapat pada genus Vanda, Dendrobium, Phalenopsis, 4 pada genus Cattleya, 6 atau 8 pollinea pada Spathoglotis plicata. Kalau capnya dibuka juga akan terlihat kepala putik (stigma) bentuknya seperti lubang (lekukan) yang berisi cairan kental agak lengket. Stigma merupakan tempat melekatkan polinia pada waktu polinasi (penyerbukan).

Menurut Utami (2012), persilangan pada anggrek ini dapat dilakukan melalui perlakuan penyerbukan sendiri atau perlakuan penyerbukan silang. Pada perlakuan penyerbukan sendiri artinya putik satu bunga diserbuki dengan benangsari (pollen) berasal dari bunga yang sama. Sedangkan penyerbukan silang artinya putik pada satu bunga diserbuki dengan menggunakan serbuk sari yang berasal dari bunga pada tanaman lain tetapi masih satu jenis tanaman. Dalam melakukan persilangan pada anggrek ada beberapa tahapan yang harus dilalui. Menurut Damayanti (2006), tahapan dalam persilangan tanaman anggrek adalah:

1. Persiapan alat. Alat yang digunakan adalah spidol, tusuk gigi, plastik label, benang kasur, tissue, dan cawan petri (Gambar 2).

                                     

Gambar 2. Alat-alat yang disiapkan untuk kegiatan penyilangan: (1) spidol permanen (2) tusuk

gigi (3)plastik label dan benang kasur (4) kertas tissue dan (5) cawan petri

2.  Pemilihan dan persiapan tanaman induk. Pilih bunga anggrek dari tanaman anggrek induk jantan dan betina yang sehat, kuat, tidak cepat layu/gugur, warna bunga cerah dan menarik. Tanaman induk jantan biasanya memiliki warna bunga yang pekat/tua, sedangkan induk betina memiliki warna yang muda atau putih (Gambar 3)

                                Gambar 3. A. Anggrek induk jantan B. Aggrek induk betina

c) Pemilihan bunga yang akan disilangkan. Faktor yang harus diperhatikan adalah:

1. Jika dari satu tangkai yang sama, pilih bunga maksimal tiga buah agar energi hanya

terfokus pada ketiga bunga tersebut;

2. Kuntum bunga terbaik adalah yang berumur 4 hari setelah mekar. Pada umur 4 hari

setelah mekar, diperkirakan polinianya sudah matang (Ign et al. 1996)

3. Jika dari satu tangkai yang sama terdapat lebih dari 1 bunga, bunga dari induk betina

dengan nomor ganjil dihitung dari pangkal tangkai paling baik untuk dipilih karena

dapat menghasilkan buah berbiji banyak dan fertil. Sedangkan dari induk jantan

diambil bunga sembarang.

4. Persilangan sebaiknya dilakukan pada pagi hari dan di tempat yang teduh

Cara menyilangan anggrek

1. Pada kuntum bunga dari induk jantan dan betina, patahkan bagian lidah (labellum),

tujuannya untuk menghindari terjadinya kegagalan penyerbukan oleh serangga (Gambar 4)

                                 

                             Gambar 4. Pematahan bagian lidah (labellum) anggrek

2. Buka cap yang menutup column pada bunga secara hati-hati dengan menggunakan tusuk

gigi, sehingga akan terlihat polinia berwarna kuning (Gambar 5)

                                   

                                              Gambar 5. Pembukaan cap column

3. Ambil polinia (gumpalan serbuk sari) yang berwarna kuning dari bunga dengan hati-hati

menggunakan tangan atau tusuk gigi dan simpan dicawan. Gambar lidah labellum, cap, dan

polinia dapat dilihat pada Gambar 6.

               Gambar 6. (1) Lidah (labellum); (2) cap penutup column, dan (3) polinia anggrek

4. Ambil tusuk gigi lalu masukkan ke dalam kepala putik (stigma) pada induk betina yang

bentuknya seperti lubang (lekukan) yang berisi cairan kental agak lengket

5. Selanjutnya polinia dari bunga jantan secara diambil secara hati-hati dengan menggunakan

tusuk gigi, sehingga polinia menempel pada tusuk gigi, dan masukkan atau ditanamkan

polinia tersebut ke dalam kepala putik (stigma) pada induk betina

6. Bunga anggrek yang telah disilangkan diberi label dengan mencantumkan nama jenis dan

warna induk jantan dan induk betina, tanggal persilangan dan nama yang melakukan

penyilangan (Gambar 7).

                                  

                                  Gambar 7. Pelabelan bunga hasil persilangan

7. Bunga anggrek yang sudah disilangkan disimpan di ruangan yang teduh dan aman dari air

hujan

8. Lakukan pengamatan setiap hari. Hibridisasi/persilangan dinyatakan berhasil apabila pada

hari ke-3-sampai ke-7 setelah persilangan bunga betina layu, sementara tangkai bunga masih

tetap segar, berwarna hijau dan mengalami pembengkakan (Gambar 8).

                              

                           Gambar 8. Tanda-tanda keberhasilan kegiatan persilangan anggrek

9. Pengamatan tetap dilanjutkan sampai minggu ke-8 atau ke-12 untuk mengetahui

perkembangan buah (bentuk buah, warna buah, diameter buah dan panjang buah).

Pengamatan dilanjutkan sampai buah anggrek siap panen. Menurut Damayanti (2006), ciri-ciri

buah anggrek siap panen adalah warna kulit buah lebih cerah, agak kekuningan.

Masing-masing Genus anggrek memiliki umur panen yang berbeda-beda. Beberapa Genus

anggrek dan umur panennya berdasarkan pengalaman ibu Maria Trisia Sunartini (fungsional

umum di Departemen Perbenihan dan Kultur Jaringan) di lapangan, dapat dilihat pada Tabel

1.

Cara memanen buah anggrek

Tangkai buah anggrek dipotong menggunakan gunting stek, jika media tabur biji sudah

siap, buah bisa langsung ditanam, namun jika media tabur bijinya belum siap, sebaiknya buah

dan labelnya dibungkus dengan kertas tissue, lalu dimasukkan kedalam kantung plastik,

kemudian disimpan di kulkas, supaya kesegarannya terjaga dan untuk menghindari pecahnya

buah anggrek sebelum ditabur.

Semoga tulisan ini bermanfaat dan bagi siapapun yang menyenangi bunga anggrek selamat

belajar menyilang anggrek semoga berhasil...!!!

DAFTAR PUSTAKA

Andayani Neny 2007. Pengaruh Waktu Pollinasi Terhadap Keberhasilan Persilangan Anggrek

Dendrobium. Buletin Ilmiah Instiper 14 (2): 14-21.

Damayanti Farida 2006. Laporan Akhir Program Hibah Kompetisi (PHK) A3: Pembentukan

Beberapa Hibrida Anggrek serta Pengaruh Beberapa Media Perkecambahan dan Media

Perbanyakan Cepat secara In Vitro pada Beberapa Anggrek Hibrida. Bandung: Jurusan

Budidaya Pertanian, Universitas Padjajaran.

Ign. Y. Kristio Budiasmoro, 1996, Menyilangkan Bunga Anggrek, Materi Kursus Budidaya

Anggrek, Lembaga Penelitian Universitas dan Fakualatas Biologi Universitas Atma Jaya,

Yogyakarta

Qodriyah Laily 2005. Teknik Hibridisasi Anggrek Tanah Songkok (Spathoglottis plicata).

Buletin Teknik Pertanian 10(2): 76-82.

Utami Dwi Susilo dan Sri Hartati 2012. Perbaikan Genetik Anggrek melalui Persilangan

Intergenerik dan Perbanyakan Secara In Vitro dalam Mendukung Perkembangan Anggrek

di Indonesia. Agrineça 12(2): 104-116.

Widiastoety D 2001. Perbaikan Genetic dan Perbanyakan Bibit secara In Vitro dalam

Mendukung Perkembangan Anggrek di Indonesia. Jurnal Litbang Pertanian 20 (4): 138-143

Assalamualaikum Wr Wb
selamat pagi teman2, hari ini adalah hari pertamaku membuat blog baru. Konten blog baru aku adalah seputar kultur jaringan tanaman. teknologi, seni, pendidikan, dan pelatihan. Aku bekerja di bagian Departemen Agribisnis Tanaman dan Kehutanan Unit Kuktur Jaringan dan Teknologi Benih tepatnya di kantor P4TK Pertanian Cianjur. Jabatanku di kantor adalah Widyaiswara Ahli Madya. Itu saja utk perkenalan hari ini, thanks you..see you tomorrow..